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        固體和液體食品中大腸菌群檢測(cè)方法
              
          固體進(jìn)入無(wú)菌室步驟:. 進(jìn)入無(wú)菌室前應(yīng)打開紫光燈進(jìn)行滅菌,時(shí)間為0。5—1小時(shí)。2. 關(guān)燈后0?5小時(shí)后放可進(jìn)入。3. 進(jìn)入更衣間更換衣服,佩帶口罩、帽子、鞋套
          實(shí)驗(yàn)步驟:1, 進(jìn)入無(wú)菌室后,先把酒精燈點(diǎn)燃,然后在用酒精棉進(jìn)行手部消毒。(酒精棉是用75%的酒精加入脫脂棉中制成)2, 準(zhǔn)備雙料管3根,單料管6根,培養(yǎng)皿7個(gè)。3, 直接從原液中吸取10ml放入雙料管,(3根每根各10ml)4, 再吸取原液1ml放入單料管中(3根每根各1ml)5, 再吸取原液1ml放入培養(yǎng)皿中(2個(gè)培養(yǎng)皿各1ml)6, 再吸取原液1ml放入鹽水管中制成-1梯度的樣液7, 更換一根吸管,從-1梯度的樣液吸取1ml樣液放入單料管中(3根每根各1ml)8, 再吸?。?梯度樣液1ml放入培養(yǎng)皿中(2個(gè)培養(yǎng)皿各1ml)9, 再把每個(gè)培養(yǎng)皿中到入營(yíng)養(yǎng)瓊脂平鋪底部搖允(注另作3個(gè)培養(yǎng)皿:空氣空白,把培養(yǎng)皿打開十分鐘倒入營(yíng)養(yǎng)瓊脂平鋪底部搖勻。瓊脂空白,把培養(yǎng)皿中倒入營(yíng)養(yǎng)瓊脂平鋪底部搖勻。鹽水空白,吸1ml生理鹽水放入培養(yǎng)皿中,倒入營(yíng)養(yǎng)瓊脂平鋪底部搖勻。)10, 把全部作好的放入培養(yǎng)箱中,溫度36C+-1×C,大腸24H+-2H,菌落48H+-2H,(待培養(yǎng)皿中的瓊脂凝固后反轉(zhuǎn)過(guò)來(lái)放入培養(yǎng)箱中。11, 梯度:-1梯度為1ml原液加入9ml生理鹽水配成-2梯度為1ml-1梯度樣液加入9ml生理鹽水配成-3梯度-4梯度配制方法和-1、-2梯度的配制方法一樣。12, 如果大腸初發(fā)酵產(chǎn)生氣泡,用接種筆沾一個(gè)產(chǎn)氣的液在伊紅美蘭平板上畫之字形然后放入培養(yǎng)箱中36C,24H+-2H 。(接種筆在每次使用前必須在酒精燈上消毒。所畫之形不能劃破伊紅美蘭瓊脂表面)。13, 取出后在用接種筆在伊紅美蘭平板之字形上挑菌,放入乳糖復(fù)發(fā)酵管中 ,然后再培養(yǎng)36C+-1C,24H++-2H。。14, 再在伊紅美蘭平板之字形上挑菌,放到載玻片上作鏡檢。(方法見標(biāo)準(zhǔn))。15, 只有鏡檢成紫紅色和乳糖復(fù)發(fā)酵管產(chǎn)氣同時(shí)成立的情況下,才能斷定這根管是不合格。。16, 清洗消毒這根試管前必須進(jìn)行消毒霉菌,121C,0。5小時(shí)同時(shí)不能放氣。
          水中大腸菌群的檢測(cè)實(shí)驗(yàn)材料和用具
          復(fù)紅亞硫酸鈉培養(yǎng)基(遠(yuǎn)藤氏培養(yǎng)基)、乳糖蛋白胨半固體培養(yǎng)基、乳糖蛋白胨培養(yǎng)液、三倍濃乳糖蛋白胨培養(yǎng)液、伊紅美藍(lán)培養(yǎng)基(EMB 培養(yǎng)基)。
          微孔濾膜(孔徑0.45?m)、濾器(容量500mL)、抽氣設(shè)備、鑷子、發(fā)酵用試管、杜氏小管、培養(yǎng)皿、刻度吸管或移液管、接種環(huán)、酒精燈。
          操作步驟
          (一)水樣的采集:1.自來(lái)水   將自來(lái)水龍頭用火焰燒灼3min滅菌,再擰開水龍頭流水5min, 以排除管道內(nèi)積存的死水,隨后用已滅菌的三角瓶接取水樣,以供檢測(cè)。2.池水、河水或湖水   將無(wú)菌的帶玻塞的小口瓶浸入距水面10~15cm深的水層中,瓶口朝上,除去瓶塞,待水流入瓶中裝滿后,蓋好瓶塞,取出后立即進(jìn)行檢測(cè),或臨時(shí)存于冰箱,但不能超過(guò)24h。
          (二)濾膜法檢測(cè)大腸菌群:l.用無(wú)菌鑷子將一無(wú)菌濾膜置于濾器的承受器當(dāng)中,將過(guò)濾杯裝于濾膜承受器上,旋緊,使接口處能密封,將真空泵與濾器下部的抽氣口連接(圖26-1)。2.加水樣100mL于濾杯中,啟動(dòng)抽真空系統(tǒng),使水通過(guò)濾膜流到下部,水中的菌細(xì)胞被截留在濾膜上。水樣用量可適當(dāng)增減使獲得菌落適量。3.用無(wú)菌鑷子小心將截留有細(xì)菌的濾膜取出,平移貼于復(fù)紅亞硫酸鈉固體培養(yǎng)基上(注意無(wú)菌操作,濾膜與培養(yǎng)基間貼緊,無(wú)氣泡),37℃培養(yǎng)16~l8h。挑選深紅色或紫紅色、帶有或不帶金屬光澤的菌落,或淡紅色、中心色較深的菌落進(jìn)行涂片和革蘭氏染色觀察。4.經(jīng)染色證實(shí)為革蘭氏陰性無(wú)芽孢桿菌者,再接種在乳糖蛋白胨半固體培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)6~8h后觀察,產(chǎn)氣者證實(shí)為大腸菌群陽(yáng)性。培養(yǎng)中應(yīng)及時(shí)觀察,時(shí)間過(guò)長(zhǎng)則氣泡可能消失。
          5.結(jié)果計(jì)算:水樣中總大腸菌群數(shù)/個(gè)?L-1=(濾膜生長(zhǎng)的菌落數(shù)/過(guò)濾水樣量/mL)×100(濾膜上菌落數(shù)以20~60個(gè)/片較為適宜)
          多管發(fā)酵法檢測(cè)大腸菌群
          1.取5支裝有3倍濃乳糖蛋白胨培養(yǎng)基的初發(fā)酵管,每管分別加入水樣10mL。另取5支裝有乳糖蛋白胨培養(yǎng)基的初發(fā)酵管,每管分別加入水樣lmL。再取5支裝有乳糖蛋白胨培養(yǎng)基的初發(fā)酵管,每管分別加入按1:10稀釋的水樣lmL(即相當(dāng)于原水樣0.1mL),均貼好標(biāo)簽。此即為15管法,接種待測(cè)水樣量共計(jì)55.5mL。各管搖勻后在37℃恒溫箱中培養(yǎng)24h。
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