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        溴化氰活化法是常用的活化方法
              
          溴化氰活化法是常用的活化方法之一,活化過程主要是生成亞胺碳酸活性基團(tuán),它可以和伯氨基(NH2)反應(yīng),主要生成異脲衍生物。
          溴化氰活化的基質(zhì)可以在溫和的條件下與配體結(jié)合,結(jié)合的配體量大。利用溴化氰活化的基質(zhì)通過進(jìn)一步處理還可以得到很多其它的衍生物。這種方法的缺點(diǎn)是溴化氰活化法的基質(zhì)和配體偶聯(lián)后生成的異脲衍生物中氨基的pKa=10.4,所以通常會帶一定的正電荷,從而使基質(zhì)可能有陰離子離子交換作用,增大了非特異性吸附,影響親和層析的分辨率。另外溴化氰活化的基質(zhì)與配體結(jié)合不夠穩(wěn)定,尤其是當(dāng)與小配體結(jié)合時,可能會出現(xiàn)配體脫落現(xiàn)象。另外溴化氰有劇毒、易揮發(fā),所以操作不便。
          溴化氰活化瓊脂糖用于配體固相化是實驗室親和層析最常用的技術(shù)之一,該方法簡便廉價,并廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)、核酸、凝集素等。下面以此為例介紹親和層析的實驗方法:
          試劑與配制
          1.Sepharose 4B
          2.CNBr(劇毒)
          3.抗原或抗體
          4.1Mol/L NaHCO3 取NaHCO3 84.01g加水至1 000ml。
          5.0.1Mol/L NaHCO3
          6.2Mol/L NaOH
          7.0.01Mol/L pH7.4 PBS 0.2Mol/L Na2HPO4 38.0ml ?0.2Mol/L Na2HPO4 162.0ml ??NaCl32.76g 加水至4 000ml。
          3.8.0.1Mol/L pH 2.8 甘氨酸即氨基乙酸—HCl緩沖液甘氨酸15.01g加水至1 000ml,取此液,加0.2Mol/L HCl84ml加水166ml共500ml。
          3.9.7Mol/L尿素
          3.10.0.2Mol/L NaHCO3,(含0.1Mol/L NaCI)1Mol/L NaHCO3 100.00ml NaCl?? 2.93g 加水至500.00ml。
          瓊脂糖活化
          1.取20ml Sepharose 4B放在布氏漏斗中抽干,加少量的0.1Mol/L pH 9.0 NaHCO3液洗滌,立即轉(zhuǎn)入100ml燒杯中,冰浴置于磁力攪拌器上。
          2.在通風(fēng)櫥內(nèi)稱取2g溴化氰,加水20ml溶解,然后倒入瓊脂糖中,小心滴加2Mol/L NaOH,使pH保持在11左右,反應(yīng)10min。在1min~2min迅速調(diào)整pH為8.0~11.0維持10min。
          3.將活化的瓊脂糖迅速倒入布氏漏斗中,以冰水抽洗成中性,再迅速以250ml冷的0.1Mol/L pH 9.0 NaHCO3抽洗。
          4.偶聯(lián)蛋白20ml 4B液體相當(dāng)于一半的固相載體。事先將需偶聯(lián)的抗原(或抗體)蛋白200mg置于0.1Mol/L pH 9.0 NaHCO3液中透析數(shù)小時(一般偶聯(lián)量為10~30mg/g載體)。
          5.將活化的瓊脂糖迅速倒入蛋白液中(在1.5min內(nèi),從抽洗到偶聯(lián)),4℃緩慢攪拌過夜,使蛋白與活化的瓊脂結(jié)合。
          6.在燒結(jié)玻璃漏斗中用200ml偶聯(lián)緩沖液(0.1mol/L碳酸氫鈉,0.5mol/L氯化鈉,pH8.3)洗偶聯(lián)介質(zhì)一次。
          7.轉(zhuǎn)移偶聯(lián)介質(zhì)至含100ml阻斷緩沖液(1mol/L乙醇胺,鹽酸調(diào)pH至8.0)的燒瓶內(nèi),室溫孵育2h或者4℃過夜。
          8.在燒結(jié)漏斗中依次用100ml偶聯(lián)緩沖液100乙酸鹽緩沖液(0.1mol/L乙酸鈉,0.5mol/L氯化鈉,pH4.0)洗偶聯(lián)介質(zhì)一次,重復(fù)此步驟四次。
          9.如果不準(zhǔn)備立即使用偶聯(lián)介質(zhì),影使用含0.02%疊氮鈉的偶聯(lián)緩沖液再洗一次。
          裝柱
          1.選柱:不宜過大,一般以1.5×15cm的層析柱可裝偶聯(lián)蛋白的瓊脂糖約30ml。
          2.裝柱:將已與蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖裝入層析柱內(nèi),擰緊下口夾,讓其下沉,數(shù)分鐘后松開下口夾,使溶液約以1ml/min的速度流出。
          3.洗柱:以0.2Mol/L pH 9.0 NaHCO3(含0.1Mol/L NaCl)洗滌至洗出液的OD280<0.02為止。收集全部的洗脫液,測得的OD280值×洗脫液的總ml數(shù)即為未偶聯(lián)蛋白的含量,由此可計算偶聯(lián)率。
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